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通过化学诱导荧光寿命成像显微镜(CA-FLIM)对翻译后修饰进行原位高通量定量分析。

High-throughput quantification of posttranslational modifications in situ by CA-FLIM.

作者信息

Grecco Hernán E, Roda-Navarro Pedro, Fengler Sven, Bastiaens Philippe I H

机构信息

Department of Systemic Cell Biology, Max Planck Institute for Molecular Physiology, Dortmund, Germany.

出版信息

Methods Enzymol. 2011;500:37-58. doi: 10.1016/B978-0-12-385118-5.00003-7.

DOI:10.1016/B978-0-12-385118-5.00003-7
PMID:21943891
Abstract

Signal transduction is mediated by posttranslational modifications (PTMs) of proteins in complex signaling networks. Quantifying PTM levels of multiple network components in response to a stimulus is therefore the key to understand how their concerted activities give rise to cellular function. We have shown that fluorescence lifetime imaging microscopy (FLIM) on cell arrays (CA-FLIM) provides a method to accurately quantify PTM levels of many proteins in situ. Herein, we describe the detailed protocol for CA-FLIM. Less than 2 days are needed from cell array preparation to data analysis, where the main limiting step is the 24h needed for transfection. After generating a single cell array containing 384 spots, it can be imaged and analyzed in less than 2h.

摘要

信号转导由复杂信号网络中蛋白质的翻译后修饰(PTM)介导。因此,量化多个网络组件对刺激的PTM水平是理解它们的协同活动如何产生细胞功能的关键。我们已经表明,细胞阵列上的荧光寿命成像显微镜(FLIM)(CA-FLIM)提供了一种在原位准确量化许多蛋白质PTM水平的方法。在此,我们描述了CA-FLIM的详细方案。从细胞阵列制备到数据分析所需时间不到2天,其中主要限制步骤是转染所需的24小时。生成包含384个点的单细胞阵列后,可在不到2小时内对其进行成像和分析。

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