Suppr超能文献

基于多重分析的细胞成像细胞术评估化疗药物所致 DNA 损伤反应

Multiplexed-Based Assessment of DNA Damage Response to Chemotherapies Using Cell Imaging Cytometry.

机构信息

Institut de Recherche en Cancérologie de Montpellier, INSERM U1194, Université de Montpellier, Institut Régional du Cancer de Montpellier, F-34298 Montpellier, France.

Institut de Génétique Humaine, CNRS, Université de Montpellier, Laboratoire Maintien de l'Intégrité du Génome au cours de la Réplication, F-34090 Montpellier, France.

出版信息

Int J Mol Sci. 2022 May 20;23(10):5701. doi: 10.3390/ijms23105701.

Abstract

The current methods for measuring the DNA damage response (DDR) are relatively labor-intensive and usually based on Western blotting, flow cytometry, and/or confocal immunofluorescence analyses. They require many cells and are often limited to the assessment of a single or few proteins. Here, we used the Celigo image cytometer to evaluate the cell response to DNA-damaging agents based on a panel of biomarkers associated with the main DDR signaling pathways. We investigated the cytostatic or/and the cytotoxic effects of these drugs using simultaneous propidium iodide and calcein-AM staining. We also describe new dedicated multiplexed protocols to investigate the qualitative (phosphorylation) or the quantitative changes of eleven DDR markers (H2AX, DNA-PKcs, ATR, ATM, CHK1, CHK2, 53BP1, NBS1, RAD51, P53, P21). The results of our study clearly show the advantage of using this methodology because the multiplexed-based evaluation of these markers can be performed in a single experiment using the standard 384-well plate format. The analyses of multiple DDR markers together with the cell cycle status provide valuable insights into the mechanism of action of investigational drugs that induce DNA damage in a time- and cost-effective manner due to the low amounts of antibodies and reagents required.

摘要

目前用于测量 DNA 损伤反应 (DDR) 的方法相对繁琐,通常基于 Western blot、流式细胞术和/或共聚焦免疫荧光分析。这些方法需要大量细胞,并且通常仅限于评估一种或几种蛋白质。在这里,我们使用 Celigo 图像细胞仪,根据与主要 DDR 信号通路相关的一组生物标志物,评估细胞对 DNA 损伤剂的反应。我们使用碘化丙啶和 calcein-AM 同时染色来研究这些药物的细胞抑制或/和细胞毒性作用。我们还描述了新的专用多重协议,用于研究十一种 DDR 标志物(H2AX、DNA-PKcs、ATR、ATM、CHK1、CHK2、53BP1、NBS1、RAD51、P53、P21)的定性(磷酸化)或定量变化。我们的研究结果清楚地表明了使用这种方法的优势,因为可以使用标准的 384 孔板格式在单个实验中对这些标志物进行基于多重的评估。对多个 DDR 标志物的分析以及细胞周期状态的分析,由于所需抗体和试剂的数量较少,因此可以提供有关诱导 DNA 损伤的研究药物作用机制的有价值的见解,从而以时间和成本有效的方式进行分析。

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